Нормы тромбоцитов, анализ по методу Фонио, способы нормализации

Подсчет числа тромбоцитов (по Фонио)

Тромбоциты участвуют во всем процессе свертывания крови, начиная от образования первичного тромба в области повреждения кровеносных сосудов и заканчивая участием в процессах регулирования проницаемости и тонуса сосудов.

Подсчет максимально точного количества тромбоцитов осуществляется при помощи камеры Горяева и метода Фонио. Подсчет тромбоцитов по Фонио довольно точен. Метод Фонио является наиболее удобным именно при автоматическом подсчете.

Единицы измерения

В мазке, подвергнутом окрашиванию, считают 1000 эритроцитов и все попавшиеся тромбоциты. В итоге получается число, выражаемое промилле. Чтобы получить абсолютное количество тромбоцитов врач клинической лабораторной диагностики данную величину перемножает на количество эритроцитов, имеющихся в 1 мкл, а затем разделит на 1000.

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Венозную, капиллярную кровь.

Как правильно подготовиться к исследованию?

  • Исключить из рациона алкоголь и лекарственные препараты (по согласованию с врачом) за сутки до сдачи крови.
  • Не принимать пищу в течение 8 часов перед исследованием, можно пить чистую негазированную воду.
  • Исключить физическое и эмоциональное перенапряжение и не курить в течение 30 минут до исследования.

Общая информация об исследовании

Важное условие для корректной работы системы свертывания – это нахождение в кровяном русле определенного количества зрелых тромбоцитов. Отклонения в любую сторону могут иметь неблагоприятные последствия. Норма тромбоцитов в крови отличается в зависимости от возраста и пола. Если их уровень понижен, появляется склонность к кровотечениям, свертываемость крови ухудшается, ее трудно остановить. Если содержание тромбоцитов превышает норму, кровь становится густой, есть риск образования тромбов и закупорки сосудов.

Тромбоциты образуются в костном мозге из гигантских клеток – мегакариоцитов. По сути, они являются фрагментами этих клеток и представляют собой окруженные мембраной мелкие безъядерные бесцветные пластинки овальной или округлой формы, включающие гранулы. Диаметр тромбоцитов составляет от 2-х до 4-х мкм. Их принято называть клетками крови, как лейкоциты и эритроциты, хотя они таковыми не являются. Это постклеточные структуры, или бляшки Биццацеро (по имени итальянского ученого, который внес большой вклад в их изучение). В крови находится около 2/3 всех тромбоцитов, остальные содержатся в селезенке.

Функции кровяных пластинок

При повреждении сосудистой стенки сразу же происходит активация кровяных пластинок. Они приобретают шаровидную форму, на них появляются выросты, из-за чего они становятся похожими на звезду. Тромбоциты в активной форме способны к слипанию друг с другом (агрегации) и прилипанию к стенке сосуда (адгезии). В плазму крови они выделяют фермент, под действием которого растворимый фибриноген преобразуется в нерастворимый фибрин, который опутывает форменные элементы крови своими нитями, словно сетями. Образовавшийся тромб закрывает дефект в поврежденном сосуде. Тромбоциты принимают участие в растворении фибринового сгустка и поддерживают спазм поврежденных сосудов. Еще одна важная функция – это обеспечение питательными веществами клеток, которые выстилают внутреннюю поверхность кровеносных сосудов.

Что означают результаты?

ВозрастРеференсные значения
Меньше 10 дней99 – 421 *10^9/л
10 дней – 1 месяц150 – 400 *10^9/л
1-6 месяцев180 – 400 *10^9/л
6 месяцев – 1 год160 – 390 *10^9/л
1-5 лет150 – 400 *10^9/л
5-10 лет180 – 450 *10^9/л
10-15 лет150 – 450 *10^9/л
Больше 15 лет180 – 320 *10^9/л

Тромбоцитопения

  • тромбоцитопеническая пурпура / гемолитико-уремический синдром;
  • ДВС-синдром (диссеминированное внутрисосудистое свертывание);
  • лекарственная тромбоцитопения (ко-тримоксазол, прокаинамид, тиазидовые диуретики, гепарин);
  • гиперспленизм;
  • идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура.

Следует помнить, что у беременных женщин в норме тромбоциты могут снижаться до 75-150×109/л.

Тромбоцитоз

  • Первичный тромбоцитоз (злокачественное заболевание миелоидного ростка костного мозга, в том числе эссенциальный тромбоцитоз и хронический миелолейкоз);
  • Вторичный тромбоцитоз после удаления селезенки, при инфекционном процессе, железодефицитной анемии, гемолизе, травме и злокачественных заболеваниях (реактивный тромбоцитоз).
  • Повышение Hb, MCV или общего количества лейкоцитов свидетельствует в пользу первичного тромбоцитоза.

Подсчет тромбоцитов по методу Фонио

Тест Fonio на подсчет тромбоцитов — это тест, который позволяет вам определить точное количество тромбоцитов в вашей крови и выявить причины многих заболеваний. Эти клетки крови являются важным фактором свертывания крови.

Давайте разберемся в сути этого метода анализа крови и о том, что говорят нам его показатели.

  1. Суть метода Фонио, алгоритм анализа
  2. Как делается анализ
  3. Как считаются результаты
  4. Особенность метода Фонио
  5. О чем говорят низкие показатели
  6. О чем говорят повышенные показатели тромбоцитов
  7. Нормы у женщин, мужчин и детей
  8. Какие факторы влияют на количество тромбоцитов
  9. Как нормализовать показатели тромбоцитов

Суть метода Фонио, алгоритм анализа

Многие пациенты не знают, что это такое — подсчет тромбоцитов определенным методом. Метод Фонио — это подсчет тромбоцитов на тысячу эритроцитов в мазках крови, окрашенных специальным красителем. Полученное число затем конвертируется в литр или 1 мкл.

Этот метод позволяет максимально точно узнать количество этих клеток крови, что, в свою очередь, повышает точность диагностики.

Как делается анализ

Общее количество этих клеток в данном объеме крови называется коагулограммой. Кровь берется из пальца. Его следует сдавать на анализ каждому обследованному человеку, так как этот показатель может помочь врачу определить множество опасных патологий.

При сдаче крови на тромбоциты следует учитывать следующие моменты:

Как считаются результаты

Для подсчета Фонио требуется 14% раствор сульфата магния и 2,6% раствор этилендиаминтетраацетата натрия. Реагенты собирают с помощью капилляра Панченкова.

Как подсчитывают тромбоциты? Для этого в поле зрения микроскопа подсчитывают до 1 тысячи эритроцитов и тромбоцитов. красные кровяные клетки. Количество тромбоцитов можно определить, умножив количество тромбоцитов в мазке на количество эритроцитов в 1 мкл и разделив продукт на 1000. Специфическое окрашивание клеток помогает врачу более точно рассчитать количество проанализированных клеток.

Анализ крови Фонио очень точен, поэтому многие специалисты используют данные, полученные с помощью этой методики.

Особенность метода Фонио

Этот метод сегодня самый распространенный. Основное отличие этого метода от других в том, что в мазке учитывается содержание элементов формы (он окрашивается).

Преимущества этого метода следующие:

  • Сотрудник лаборатории может четко видеть все клетки в мазке;
  • Кровь анализируется в любое время, независимо от времени взятия пробы крови;
  • Формула для подсчета количества кровяных телец довольно проста, и количество также зависит от количества тысяч красных кровяных телец в микролитре.

О чем говорят низкие показатели

Если у человека низкое количество тромбоцитов, это означает, что у него развивается тромбоцитопения. Это может произойти:

  • от воздействия радиации;
  • отравление свинцом, отравление свинцом, отравление свинцом, отравление свинцом;
  • различные заболевания кровеносной системы;
  • если у человека развивается коллагеноз;
  • если у них развивается хронический нефрит.

У людей с низким уровнем тромбоцитов часто возникают внутренние кровотечения, синяки и гематомы как следствие пониженной гибкости кровеносных сосудов. Также следует отметить экхимозы, то есть точечные кровоизлияния.

О чем говорят повышенные показатели тромбоцитов

Увеличение количества тромбоцитов в крови (тромбофилия) наблюдается в следующих случаях:

  • употребление некоторых лекарств;
  • если вам сделали операцию;
  • если была удалена селезенка;
  • после травм, если они сопровождались большой кровопотерей;
  • когда у человека развивается злокачественная опухоль;
  • при железодефицитной анемии.

Если уровень тромбоцитов повышен, это очень опасно для здоровья и жизни человека. В этом случае значительно повышается риск тромбоза. В этом случае внутри сосуда образуется сгусток крови, препятствующий нормальному течению крови.

Особенно опасным считается увеличение количества этих клеток у беременных. Это может иметь очень неприятные последствия:

  • тяжелая токсемия у беременных;
  • аборт;
  • тяжелая задержка плода;
  • варикозное расширение вен у беременных;
  • тромбоз нижних конечностей у беременных;
  • увеличение тромба в сосуде (тромбоэмболия);
  • инфаркт.

При таких патологиях, как энцефалит, воспаление печени, легких, токсоплазмоз, также увеличивается количество тромбоцитов. Это состояние сопровождается увеличением количества лейкоцитов.

Нормы у женщин, мужчин и детей

Норма тромбоцитов по методу Фонио колеблется от 120 до 400 тысяч в одном кубическом миллиметре крови. Однако будут существенные различия в показателях, полученных при анализе для разных групп населения. Такие отличия являются вариантами стандарта.

Итак, норма у детей от года — от 180 до 320 тысяч в одном кубическом миллиметре. У новорожденных нормальные пределы количества тромбоцитов несколько шире — от 100 до 420 тысяч в одном кубическом миллиметре крови.

У мужчин количество тромбоцитов колеблется от 180000 до 400000. Максимальное их количество наблюдается в 40 лет. Затем происходит небольшое уменьшение количества тромбоцитов, но оно не опускается ниже 320 000.

Норма для женщин — 180–340 тысяч. эти элементы крови. Максимальное количество приходится на 16 лет. Во время менструации нормальное количество этих клеток снижается до 150 000. У подростков это число может упасть до 75000.

Какие факторы влияют на количество тромбоцитов

Многие факторы участвуют в увеличении количества тромбоцитов. Например, все острые инфекции в организме неизбежно приводят к увеличению этих элементов крови. То же самое происходит с нарушениями кроветворной системы, опухолевой патологией.

Если человек часто подвергается стрессу, это также влияет на количество тромбоцитов в крови. Кому-то может показаться странным, что при кровопотере количество этих элементов формы увеличивается. Но именно так организм человека пытается компенсировать потерю крови.

Повышенное количество тромбоцитов в крови также может наблюдаться у людей, длительное время употребляющих алкоголь.

Если человек постоянно и бесконтрольно принимает препараты с тромбоцитопеническими свойствами, со временем картина крови у него существенно меняется. То же самое происходит с поражением многих органов, особенно щитовидной железы, печени и т.д. Иногда кровотечение из носа или порез могут негативно повлиять на количество тромбоцитов и снизить количество тромбоцитов.

Как нормализовать показатели тромбоцитов

Способы нормализации количества этих элементов формы будут сильно различаться в зависимости от того, какие результаты будут получены в тесте. Однако все меры будут бесполезны, если на организм и дальше будут воздействовать вредные факторы. Вы должны сначала устранить их. Старайтесь избегать эмоциональных и физических перегрузок.

Таким образом, вы можете увеличить количество тромбоцитов следующим образом:

  1. Исключите из рациона соленья, алкоголь, водоросли, виноград (красный).
  2. Включите в свой рацион такие продукты, как свежая рыба, печень, перец, яблоки, гречка.
  3. Врач назначит необходимые лекарства для увеличения количества тромбоцитов в крови. Самолечение ими категорически запрещено!
  4. Не используйте те препараты, у которых есть тромбоцитопения как побочное действие.
  5. Принимайте такие витамины, как A, группа B, C.

Чтобы уменьшить количество этих кроветворных элементов, в первую очередь необходимо наладить образ жизни и снизить уровень стресса. Нельзя заниматься спортом со склонностью к травмам.

Чтобы уменьшить количество этих клеток крови:

  • использовать препараты ацетилсалициловой кислоты в рекомендованных врачом дозах;
  • откажитесь от плодов шиповника, бананов, манго, гранатов, так как эти продукты увеличивают количество тромбоцитов;
  • ввести в рацион больше клюквы, черники, облепихи, свеклы и других продуктов;
  • принимать поливитамины и добавки магния;
  • Придерживайтесь ежедневного количества воды и избегайте обезвоживания.

Как видите, метод подсчета тромбоцитов Fonio очень точен. А если анализ показал несоответствие норме, можно быстро и эффективно скорректировать показатель этих кроветворных элементов и избежать опасных последствий.

Если отклонения, связанные с отклонениями количества этих клеток от нормы, не исправить, возможно развитие очень серьезных патологий.

Гематологические исследования

1. Общий анализ крови

WBC -Общее количество лейкоцитов (х10 9 /л)

RBC -Общее количество эритроцитов (10 12 /л)

HGB -Гемоглобин (г/л)

HCT -Гематокрит (%, л/л)

MCV -Средний объем эритроцита (фл)

MCH -Среднее содержание гемоглобина в эритроците (пг)

MCHC -Средняя концентрация гемоглобина в эритроците (%)

RDW-SD -Ширина распределения эритроцитов по объему (%)

RDW-CV -Ширина распределения эритроцитов по объему (фл)

PLT -Общее количество тромбоцитов (х109/л)

PDW -Ширина распределения тромбоцитов по объему (%)

MPV -Средний объем тромбоцитов (фл)

P-LCR -Количество гигантских ( ˃12 мкм) тромбоцитов (%)

IG % -Относительное количество незрелых гранулоцитов (%)

NEUT % -Относительное количество нейтрофилов (%)

LYMPH % -Относительное количество лимфоцитов (%)

MONO % -Относительное количество моноцитов (%)

E0% -Относительное количество эозинофилов (%)

BASO % -Относительное количество базофилов (%)

IG # -Абсолютное количество незрелых гранулоцитов (х10 9 /л)

NEUT# -Абсолютное количество нейтрофилов (х10 9 /л)

LYMPH # -Абсолютное количество лимфоцитов (х10 9 /л)

MONO# -Абсолютное количество моноцитов (х10 9 /л)

E0# -Абсолютное количество эозинофилов (х10 9 /л)

BASO# -Абсолютное количество базофилов (х10 9 /л)

Анализ выполняется на гематологических анализаторах фирмы SYSMEX.

2. Посчет тромбоцитов (на анализаторе и при микроскопии по Фонио)

Тромбоциты – безъядерные клетки крови дисковидной формы размером 2 – 4 микрометра. Тромбоциты выполняют ангиотрофическую и адгезивно-агрегационную функции и принимают участие в процессах свертывания и фибринолиза, обеспечивают ретракцию (уплотнение) кровяного сгустка. Они способны переносить на своей мембране циркулирующие иммунные комплексы, поддерживать спазм сосудов. При активации тромбоциты приобретают сферическую форму и образуют специальные выросты (псевдоподии), с помощью которых они соединяются между собой (агрегируют) и прилипают к поврежденной стенке сосуда (способность к адгезии). Активированные тромбоциты выбрасывают содержимое своих гранул в кровяное русло: факторы свертывания, пероксидазу, серотонин, ионы кальция, АДФ, фактор Виллебранда, тромбоцитарный фибриноген, фактор роста тромбоцитов, которые участвуют в процессе свертывания.

Анализ включает в себя определение следующих параметров:

PLT -Общее количество тромбоцитов (х10 9 /л)

PDW – Ширина распределения тромбоцитов по объему (%)

MPV – Средний объем тромбоцитов (фл)

P-LCR -Количество гигантских ( ˃12 мкм) тромбоцитов (%)

Тромбоциты по Фонио (х10 9 /л)

Анализ выполняется на гематологических анализаторах фирмы SYSMEX и с помощью микроскопа фирмы OLIMPUS.

Подсчет количества тромбоцитов осуществляется двумя методами:

– на гематологическом анализаторе окрашенных специальным красителем тромбоцитов (оптический метод)

– при световой микроскопии окрашенного мазка крови с использованием иммерсионного масла

* Анализ выполняется совместно с клиническим анализом крови.

ПОКАЗАНИЯ К НАЗНАЧЕНИЮ

  • Тромбоцитопении
  • Тромбоцитоз

ПРИЧИНЫ ТРОМБОЦИТОЗА (увеличение количества тромбоцитов)

Реактивный тромбоцитоз (носит временный характери вызван активацией кроветворения)

  • После спленэктомии ( 3 -6 месяцев)
  • После острой кровопотери (кровоизлияния, оперативные вмешательства)
  • После острого гемолиза
  • При злокачественных новобразованиях
  • Ревматоидный артрит
  • Язвенный колит
  • Остеомиелит
  • Туберкулез

Опухолевый тромбоцитоз (при миелопролиферативных заболеваниях)

  • Миелоидный лейкоз
  • Эритремия
  • Идиопатическая геморрагическая тромбоцитоемия

ПРИЧИНЫ ТРОМБОЦИТОПЕНИИ (уменьшение количества тромбоцитов)

  • Идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура
  • Гипо- и апластические анемии
  • Ауто- и имунные гемолитические анемии
  • Лейкозы
  • Метастазы рака в костный мозг
  • Дефицит витамина В12 и фолиевой кислоты
  • Лекарства
  • Вирусные инфекции (в т.ч. системная красная волчанка)
  • Лимфопролиферативные заболевания
  • Протезирование клапанов сердца
  • Экстракорпральное кровообращение
  • Портальная гипертензия

3. Подсчет ретикулоцитов

Количество ретикулоцитов в периферической крови является показателем активности эритропоэза, то есть отражает эритропоэтическую активность костного мозга.

Анализ включает в себя определение 7 параметров:

RET% – Относительное количество ретикулоцитов (%0)

RET# -Абсолютное количество ретикулоцитов (х10 9 /л)

IRF% – Относительное количество незрелых ретикулоцитов (%)

LFR% – Относительное количество зрелых ретикулоцитов (%)

MFR% – Относительное количество средних ретикулоцитов (%)

HFR% -Относительное количество больших ретикулоцитов (%)

RET – He -Содержание гемоглобина в ретикулоците (пг)

Анализ выполняется на гематологических анализаторах фирмы SYSMEX.

* Анализ выполняется совместно с клиническим анализом крови.

ПОКАЗАНИЯ К НАЗНАЧЕНИЮ

  • Анемии (критерий диагностики апластической анемии)
  • Диагностика эффективности эритропоэза
  • Оценка терапии неэффективного эритропоэза препаратами витамина В12, ЭПО, препаратами железа
  • Лейкозы
  • Миелодиспластические синдромы
  • Оценка состояния после трансплантации костного мозга

ПРИЧИНЫ РЕТИКУЛОЦИТОЗА (повышение количества ретикулоцитов)

  • Острая геморрагическая анемия (после острой кровопотери на 3-4 сутки)
  • Гемолитическая анемия
  • Эффективная терапия следующими препаратами:

витамин В12 (ретикулоцитарный криз на 5 – 8 день терапии)

  • препараты железа

препараты для лечения эритремии

препараты для лечения паркинсонизма

  • Гемолиз
  • Гемолитическая анемия
  • Талассемия
  • Малярия
  • Эритролейкозы
  • Метастазы в костный мозг
  • Успешная трансплантация костного мозга ( увеличение более чем на 20%)
  • Употребление допинга спортсменами (прием ЭПО)
  • Курение

ПРИЧИНЫ РЕТИКУЛОЦИТОПЕНИИ (снижение количества ретикулоциов)

  • Апластическая анемия
  • Анемии хронических заболеваний
  • Железодефицитная анемия
  • Сидеробластная анемия
  • В12-дефицитная анемия
  • Миелодиспластические синдромы
  • Опухолевые процессы в костном мозге
  • Нарушения работы щитовидной железы (микседема)
  • Тяжелые болезни почек (снижение эритропоэза)
  • Тяжелый алкоголизм
  • Хронические инфекции
  • Прием оральных контацептивов, противосудорожных препапратов

4. Определение СОЭ

Анализ включает в себя определение следующего параметра:

СОЭ -Скорость оседания эритроцитов (мм/ч).

Анализ выполняется по методу Панченкова как на анализаторе ROLLER,так и с помощью ручной методики.

5. Подсчет формулы крови (микроскопия)

Анализ включает в себя следующие параметры:

ПЯ % – Относительное количество палочкоядерных нейтрофилов (%)

СЯ % – Относительное количество сегментоядерных нейтрофилов (%)

ЛФ % -Относительное количество лимфоцитов (%)

МОН % -Относительное количество моноцитов (%)

ЭОЗ% -Относительное количество эозинофильных нейтрофилов (%)

БАЗ % -Относительное количество базофильных нейтрофилов (%)

Анализ выполняется путем подсчета групп лейкоцитов в окрашенном с помощью автоматической системы для окраски HEMATEK мазке крови при помощи световой микроскопии.

* Анализ выполняется совместно с клиническим анализом крови.

6. Определение свободного гемоглобина в плазме

У здоровых лиц в плазме содержится лишь незначительное (1—4 мг%) количество свободного гемоглобина. Это гемоглобин, выделившийся из закончивших свой жизненный цикл эритроцитов. Содержание свободного гемоглобина в плазме меняется в зависимости от интенсивности гемолиза и гемоглобинсвязывающей способности белков плазмы.

Анализ включает в себя определение следующего параметра:

Hb св. – Свободный гемоглобин (г/л)

Анализ выполняется на анализаторе HemoCue.

* Для расчета процента гемолиза, помимо определения свободного гемоглобина, нужен клинический анализ крови.

ПРИЧИНЫ ГЕМОГЛОБИНЕМИИ (повышенное содержание свободного гемоглобина в плазме крови)

Как правило, причиной повышения концентрации свободного гемоглобина являются состояния, при которых происходит повышенное разрушение эритроцитов:

  • Гемолитические анемии
  • Гемолитическая болезнь новорожденных
  • Гемоглобинопатии (серповидноклеточная анемия и ее варианты, талассемия, гемоглобиноз С),
  • Отравление гемолитическими ядами (чаще всего при укусах змей) с последующим развитием ДВС-синдрома
  • Гемолитические кризы в результате тяжелых посттрансфузионных реакций, при групповой или резус-несовместимости
  • Инфекционные заболевания (при малярии и как вторичный симптом при сепсисе)
  • Массивные ожоги (термические или химические)
  • Физиологическая гемоглобинемия (в результате воздействия на эритроидные клетки, расположенные в ткани легких или желудка при курении, гастрите, язвенной болезни).

7. Подсчет шизоцитов

Анализ включает в себя определение следующего параметра:

Шизоциты – (шт. на 10000 эритроцитов)

Подсчет шизоцитов (фрагментов эритроцитов) осуществляется при помощи световой микроскопии окрашенного мазка крови с использованием иммерсионного масла.

* Анализ выполняется совместно с клиническим анализом крови.

Повышенные и сниженные тромбоциты в крови

Тромбоциты — основа нашей свёртывающей системы. Чем грозит избыток и недостаток «кровяных пластинок»?

Автор: Алексей Федоров

Дата публикации: 15.12.2020

Мы продолжаем серию пубикаций о лабораторных исследованиях крови. На нашем портале вы можете найти полезные сведения о том, как самостоятельно расшифровать показатели в общем и биохимическом анализах, а также в липидном профиле. В этот раз доктор Федоров отвечает на вопросы об уровне тромбоцитов в крови. Если у вас остались свои вопросы, вы можете задать их, воспользовавшись сервисом Доктис.

Способность крови свёртываться – одна из основ жизни. Ведь если бы этот механизм не был заложен, любая, самая незначительная рана, становилась смертельно опасной. За свёртывающую систему отвечает целый ряд биохимических соединений, который принято называть факторами, но основу процесса составляют самые маленькие форменные элементы крови – тромбоциты. К сожалению, нарушение в работе этой системы может привести к последствиям, не менее серьезным, чем кровотечение.

Избыток тромбоцитов грозит повышением риска внутрисосудистого тромбообразования, низкие тромбоциты в крови – причина внутренних кровоизлияний.

1. О чём говорит снижение уровня тромбоцитов в крови?

Нижняя граница нормы содержания тромбоцитов крови составляет 150 тыс/мкл. Причиной снижения PLT (обозначение тромбоцитов в анализе крови) могут оказаться многочисленные, но редко встречающиеся врождённые тромбоцитопении (синдром Фанкони, Вискотта-Олдрича и т. д. ), а также тромбоцитопении приобретённые. Самая частая причина приобретённых – постоянный приём препаратов антиагрегантов, особенно при двухкомпонентной терапии (ацетилсалициловая кислота + клопидогрель), к счастью, число тромбоцитов в этом случае обычно снижено не сильно. Среди других причин низких тромбоцитов в крови – бактериальные и вирусные инфекции, анемии, спленомегалия, застойная сердечная недостаточность и т. д.

Клинические признаки тромбоцитарной недостаточности (кровоточивость дёсен, появление синяков, частые кровоизлияния в склеру и т. д. ) появляется при снижении уровня тромбоцитов ниже 50 тыс/мкл – это тот показатель, когда к врачу нужно идти незамедлительно.

2. О чём говорит повышение уровня тромбоцитов в крови?

Верхняя граница нормы тромбоцитов в анализе крови — 400 тыс/мкл. Повышение уровня тромбоцитов гораздо чаще происходит по физиологическим причинам. Это так называемые реактивные тромбоцитозы. Их причиной может оказаться недавнее физическое перенапряжение, перенесённый стресс, обезвоживание, то есть физиологическое сгущение крови. К патологическим факторам чаще всего относятся те из них, которые тоже сгущают кровь – анемия из-за хронической кровопотери или острая кровопотеря, обезвоживание в результате интоксикации. К причинам абсолютного повышения уровня тромбоцитов относят воспалительные заболевания, туберкулёз, злокачественные новообразования вообще и системы кроветворения в частности.

Увеличение уровня тромбоцитов выше 500 тыс/мкл значительно повышает риск тромбозов и требует подбора антиагрегантной терапии – приема особых препаратов.

3. Как образуется тромб? Зачем назначают анализ на индуцированную агрегацию тромбоцитов?

В норме тромбоциты в крови находятся в неактивном состоянии, клетки имеют дисковидную, немного вытянутую форму, поэтому в старых учебниках их называют «кровяные пластинки». Когда начинается кровотечение, тромбоциты активируются: приобретают сферическую форму и образуют специальные выросты – псевдоподии. С их помощью они могут соединяться друг с другом (агрегировать) и прилипать к месту повреждения сосудистой стенки (адгезировать).Два этих процесса обеспечивают основу тромбообразования.

Чтобы оценить качество агрегации тромбоцитов и выяснить, не снижена ли она, или, наоборот, не происходит слишком интенсивно, назначают анализ на индуцированную агрегацию тромбоцитов. Для этого берут кровь из вены, добавляют к ней специальные вещества (индукторы активации) и оценивают процесс.

При подготовке к исследованию важно соблюдать некоторые условия – в течение 3 дней соблюдать специальную диету, составленную врачом, за 24 часа исключить прием стимуляторов (кофе, алкоголь, никотин, чеснок) и препаратов иммуностимуляторов, за 8 часов отказаться от приема лекарств и жирных продуктов.

Низкая активность тромбоцитов встречается при заболеваниях системы кроветворения, постоянном приеме препаратов антиагрегантов, в этом случае продолжительность кровотечения увеличивается. Повышенная агрегация, наоборот, увеличивает риск тромбообразования: венозных тромбозов, инфаркта, инсульта. Вы спросите – зачем назначать анализ на индуцированную активацию, если риск кровотечения/тромбообразования можно оценить по общему количеству тромбоцитов? Увы. Даже при нормальном их количестве большая часть клеток может оказаться «неполноценными», таким образом речь идёт о выраженной тромбоцитарной недостаточности при их нормальной концентрации в крови.

4. Почему важно назначать анализ крови на резистентность тромбоцитов к аспирину и клопидогрелю?

Согласно данным исследований, 35% людей имеют сниженный антиагрегационный эффект на применение аспирина, а у 19% он практически не влияет на агрегацию. Это значит, что у каждого пятого пациента аспирин не помогает избежать осложнения атеросклероза. Меньшее распространение, но не меньшую клиническую важность играет резистентность к клопидогрелю – препарату, приём которого жизненно важен после стентирования артерий. Поэтому, считается оправданным назначать анализ на аспирино- и клопидогрелерезистентность перед назначением этих препаратов, особенно, когда запланировано стентирование коронарных артерий. Для диагностики резистентности к аспирину сегодня применяются 2 теста: оптическая аггрегометрия, считающийся «золотым стандартом», а также несколько разновидностей портативных тест-систем. Похожий подход применяется и для диагностики резистентности к клопидогрелю, которая, по данным исследований регистрируется у 11% больных, получающих препарат. В случае выявления резистентности у врачей остаётся пространство для маневра – назначить препарат из другой группы и избежать опасных осложнений.

Уровень тромбоцитов позволяет оценить как риск тромбообразования, так и наоборот, вероятность недостаточной свертываемости крови, грозящей развитием внутренних кровоизлияний и кровотечений. Исследование функции тромбоцитов даёт врачу возможность правильно подобрать антиагрегантную терапию – важнейший компонент профилактики и лечения сердечно-сосудистых заболеваний.

Тромбоциты по Фонио

*без учета забора материалов

Срок выполнения (раб.дн.)

8-12 каждый день

зависят от тест-системы и данных пациента, указываются в бланке результата

** График сдачи и условия подготовки актуальны только для данного анализа. Если необходимо сдать несколько анализов – рекомендуем уточнить график и условия по телефону колл-центра.

*** Обращаем ваше внимание, что сроки выполнения анализов могут быть увеличены по техническим причинам, связанным с особенностями биоматериала (гемолизированные, хилезные образцы, наличие сгустков и т.д.), что требует перестановок, а в некоторых случаях повторного забора материала.

Описание

Тромбоциты – клетки крови, которые отвечают за тромбообразование (свертывание крови)

Показания к назначению анализа

1. Диагностика полицитемий, тромбоцитопений, тромбоцитозов
2. Мониторинг эффективности лекарственной терапии

Особенности теста

Подсчет тромбоцитов проводится методом микроскопии.

  • Лабораторные анализы
  • УЗИ
  • Эндоскопия
  • Генетические исследования
  • Функциональная диагностика

Врачи-специалисты

  • Аллерголог-иммунолог
  • Гастроэнтеролог
  • Гематолог
  • Генетик, тератолог
  • Гинеколог, гинеколог-эндокринолог
  • Гомеопат
  • Дерматолог-венеролог
  • Кардиолог
  • Косметолог
  • Маммолог
  • Мануальный терапевт, остеопат
  • Невролог (невропатолог)
  • Онколог
  • Отоларинголог (ЛОР)
  • Педиатр
  • Проктолог
  • Пульмонолог
  • Терапевт
  • Уролог, уролог-андролог
  • Физиотерапевт, гирудотерапевт
  • Флеболог
  • Хирург
  • Эндокринолог
  • Стоматология

Медицинские центры

  • МедЛаб – Васильевский
  • МедЛаб – Дыбенко
  • МедЛаб – Елизаровская
  • МедЛаб – Жемчужина
  • МедЛаб – Комендантский
  • МедЛаб – Купчино
  • МедЛаб – Озерки
  • МедЛаб – Парк Победы
  • МедЛаб – Рыбацкое
  • МедЛаб – Удельная
  • МедЛаб – Лиговский
  • Гомеопатическая клиника Яворского
  • Центр лабораторной диагностики
  • Лицензии
  • Правовая информация

Будни: 8.00 – 21.00

Выходные: 8.00 – 20.00

Используя наши сервисы записи с сайта вы соглашаетесь с политикой обработки персональных данных

© Сеть медицинских центров и лабораторий МедЛаб

Имеются противопоказания. Необходима консультация специалиста.

Запись к врачу

Записаться к врачу on-line можно в разделе Стоимость приемов врачей

К некоторым врачам on-line запись не проводится. В этом случае можно записаться по телефону колл-центра 600-22-10 или отправить заявку по форме ниже.

Подробнее о записи к доктору Яворскому А.В. см. тут: Гомеопатическая клиника доктора Яворского

Подробнее о записи к доктору Колосовой О.В. см.тут: МедЛаб в Купчино

Обратная связь
Укажите тему вашего вопроса:
Описание темы:

Подсчитать стоимость анализов (на полной версии сайта) и уточнить срок их выполнения можно тут

При обращении обязательно указывайте лабораторный номер (6 цифр под штрих-кодом)!

Обращаем Ваше внимание, что рассылка результатов анализов по электронной почте осуществляется по готовности в районе 13.00 и 18.00.

Рассылка ответов ПЦР на коронавирус – с 19.00 до 20.00.

Порядок оформления заявки на справку указан тут: Оформление справки в налоговую службу (МНС)

Если ваш вопрос не освящен в статье пожалуйста заполните форму ниже.

Правила подготовки к УЗИ и др. процедурам можно уточнить тут

Записаться на приемы врачей, УЗИ, ФГДС и мазок на коронавирус можно в соответствующих разделах или по кнопкам.

Чтобы отменить/перенести запись – нужно позвонить по телефону медцентра или колл-центра 600-22-10 или оставить свой контактный телефон (просьба не оставлять в данном сообщении своих полных персональных данных).

Здесь Вы можете задать краткий вопрос и получить краткий ответ врача-специалиста. Но поставить диагноз, назначить лечение, дать рекомендации по приёму лекарств и т.д. врач сможет только при Вашем личном посещении. Расшифровка результатов исследований, проводится врачом вместе с другими клиническими данными и возможна только на приеме.

Укажите, пожалуйста, свою специальность и контактный телефон (просьба не оставлять в данном сообщении своих полных персональных данных).

Для оперативного разбора ситуации укажите, пожалуйста, свой регистрационный номер из договора (в разделе реквизиты заказчика), место, дату обращения и контактный телефон (просьба не оставлять в данном сообщении своих полных персональных данных).

Мы оставляем за собой право не отвечать на неконкретные вопросы, на вопросы по рекламе и снабжению, не имеющие отношения к содержанию сайта, а также, находящиеся вне компетенции технической службы, а также на вопросы, заданные в неуважительной форме.

Клиническая интерпретация некоторых показателей гематологических анализаторов

Куриляк О.А., к.б.н.

Из архива газеты “Новости А/О Юнимед”

Эритроцитарное звено гемограммы

Оценивается по количеству эритроцитов (RBC), концентрации гемоглобина (HGB), гематокриту (HCB) и эритроцитарным индексам (MСV, MCH, MCHC и RDW).

1. MCV – средний объем эритроцита измеряется в мкм 3 или фемтолитрах (фл). MCV меняется в течение жизни: у новорожденных достигает 128 фл, в первую неделю снижается до 100, к году составляет 77 – 79 фл, в возрасте 4 – 5 лет нижняя граница нормы (80 фл) стабилизируется. MCV у взрослых ниже 80 фл оценивается как микроцитоз, выше 95 фл – как макроцитоз.

2. МСН – среднее содержание гемоглобина в отдельном эритроците измеряется в абсолютных единицах (норма 27 – 31 пг). По МСН анемии делят на нормо-, гипо- и гиперхромные.

3. МСНС – средняя концентрация гемоглобина в эритроците, эта величина характеризует значение концентрации гемоглобина внутри эритроцита (норма 33 – 37 г/дл). Снижение МСНС наблюдается при заболеваниях, связанных с нарушением синтеза гемоглобина. Тем не менее, это самый стабильный, генетически детерминированный гематологический показатель. Любая неточность, связанная с определением гемоглобина, гематокрита, MCV, приводит к увеличению МСНС, поэтому этот параметр используется как индикатор ошибки прибора или ошибки, допущенной при подготовке пробы к исследованию.

4. RDW – показатель анизоцитоза эритроцитов, он расчитывается как коэффициент вариации среднего объема эритроцитов (норма 11.5 – 14.5%). RDW характеризует колебания объема эритроцитов и улавливается прибором значительно точнее, чем при визуальном просмотре мазка крови. Оценка анизоцитоза под микроскопом сопровождается целым рядом ошибок. При высыхании эритроцитов в мазке их диаметр уменьшается на 10-20%, в толстых мазках он меньше, чем в тонких. Полностью избавиться от артефактов позволяет только автоматизированный подсчет жидкой крови, при котором сохраняется стабильность клеток.

RDW представляется важным дополнительным критерием для диагностики и динамического наблюдения за результатами лечения пациентов с анемиями.

Рассмотрим диагностическую значимость этого параметра для мониторинга наиболее распространенного типа анемий – железодефицитной анемии (ЖДА). Гематологические параметры существенно зависят от стадии ЖДА. Так, в начальной стадии анемии этого типа количество эритроцитов находится в пределах нормы, а содержание гемоглобина может быть на нижней границе нормы или сниженным, что отражает нормальную пролиферативную активность костного мозга. Эритроцитарнная гистограмма несколько уширяется и начинает сдвигаться влево, RDW повышается (Рис. 1, 2).

Рис.1. Эритроцитарная гистограмма в норме

Рис. 2. Начальная стадия железодефицитной анемии. Незначительное уширение эритроцитарной гистограммы. Повышение RDW

По мере нарушения гемоглобинообразования происходит снижение MCV, МСН, МСНС, увеличение RDW. Эритроцитарная гистограмма существенно уширяется и значительно сдвигается влево (Рис.3).

Увеличение RDW

На фоне лечения железодефицитной анемии препаратами железа происходит нормализация концентрации гемоглобина, MCV, МСН, МСНС.

При этом за счет появлении в крови популяции нормальных и молодых форм (полихромафилов) RDW продолжает возрастать, основание эритроцитарной гистограммы сдвигается вправо, а сама кривая имеет два пика, один из которых располагается в области микроэритроцитов, а другой – в зоне макроэритроцитов (Рис. 4а).

Рис. 4. Динамика показателей красной крови у больной железодефицитной анемией в процессе лечения

Постепенно пики на эритроцитарной гистограмме стираются, основание ее сужается и гистограмма принимает нормальную форму. Динамика восстановления показателей крови при ЖДА проиллюстрирована на Рис. 4а – 4в. Отметим, что последним гематологическим показателем, который нормализуется при успешном лечении анемии, является RDW. Изменения гематологических показателей коррелируют с уровнем основных показателей обмена железа (содержанием сывороточного железа, ферритина, общей железосвязывающей способностью).

Помимо железодефицитной анемии, эритроцитарная гистограмма с двумя пиками эритроцитов между 50 и 140 фл, указывающая на присутствие гетерогенной популяции клеток, может наблюдаться после гемотрансфузий.

По данным некоторых зарубежных авторов в целом ряде случаев железодефицитной анемии RDW становится выше нормы несколько раньше, чем изменяются остальные параметры (MCV и гемоглобин). Предлагается изолированное повышение RDW расценивать в качестве раннего прогностического признака развития дефицита железа (Бессман Д.Д.,1989; Wintrobe M.M.,1993). Кроме того, этот показатель может оказывать помощь при дифференциальной диагностике микроцитарных анемий. Так, у пациентов с малой b-талассемией отмечается низкий уровень MCV, показатель RDW обычно нормален, тогда как при дефиците железа MCV – низкий, а RDW – высокий.

Использование современных гематологических анализаторов позволяет быстро и с более высокой точностью, чем при мануальных методах, оценить состояние кроветворной системы, определить направление дальнейшегоисследования, оценить динамику изменений красной крови в процессе проводимой терапии.

Тромбоцитарное звено гемограммы

Оценивается по количеству тромбоцитов, тромбоцитарным индексам (MPV, PDV, тромбоцитарной гистограмме и PCT).

1. MPV – средний объем тромбоцитов – увеличивается с возрастом: с 8.6 – 8.9 фл у детей 1 – 5 лет до 9.5 – 10.6 фл у людей старше 70 лет. «Молодые» кровяные пластинки имеют больший объем, поэтому при ускорении тромбоцитопоэза средний объем тромбоцитов возрастает.

Увеличение среднего объема тромбоцитов наблюдается у больных с идиопатической тромбоцитопенической пурпурой, тиреотоксикозом, сахарным диабетом, миелопролиферативными заболеваниями, атеросклерозом, у курильщиков и лиц, страдающих алкоголизмом. MPV снижается после спленэктомии, при синдроме Вискотта-Олдрича.

2. PDV – ширина распределения тромбоцитов по объему – измеряется в процентах (коэффициент вариации тромбоцитометрической кривой) и количественно отражает гетерогенность популяции этих клеток по размерам (степень анизоцитоза тромбоцитов) (Рис. 5). В норме этот показатель составляет 1 — 20%. Наличие в крови преимущественно молодых форм приводит к сдвигу гистограммы вправо, старые клетки располагаются в гистограмме слева.

Рис. 5. Тромбоцитарная гистограмма: а) в норме; б) тромбоцитопения; в) гипертромбоцитоз, наличие макротромбоцитов

3. РСТ – тромбокрит является параметром, который отражает долю объема цельной крови, занимаемую тромбоцитами. Он аналогичен гематокриту и выражается в процентах. В норме тромбокрит составляет 0,15 – 0,40%.

Дифференциальный подсчет лейкоцитов

Дифференциальный подсчет лейкоцитов заключается в регистрации всех встречающихся в поле зрения лейкоцитов раздельно по их принадлежности к тем или иным группам. При мануальном дифференциальном подсчете имеются 3 главных источника ошибок: неравномерное распределение клеток в препарате, неправильное распознавание клеток и статистическая погрешность. В первом случае имеет значение соблюдение правил передвижения препарата при дифференциальном счете клеток. Плохо приготовленный или плохо прокрашенный мазок – основная причина ошибок, связанных с неправильным распознаванием клеток. Наибольшая погрешность, однако, связана с тем, что подсчитывается малое количество клеток в образце – 100 или, в лучшем случае, 200. Для примера отметим, что содержание моноцитов равное 10%, подсчитанное при анализе 100 клеток в световом микроскопе, на самом деле означает, что содержание моноцитов в крови колеблется от 4,9% до 17,6% (при 95% доверительном интервале). Тот же показатель, полученный при проточном анализе 10 000 клеток, соответствует содержанию моноцитов от 9,4% до 10,7%. Увеличить же количество регистрируемых клеток при мануальном подсчете не представляется возможным, так как это сразу снижает производительность лаборатории.

В зависимости от класса гематологического анализатора возможности дифференцированного подсчета лейкоцитов существенно различаются. Так, наиболее простые из автоматических анализаторов (8-ми параметровые анализаторы) подсчитывают общее количество лейкоцитов без разделения на субпопуляции. Приборы последнего поколения (40-ка параметровые анализаторы) подсчитывают полную лейкоцитарную формулу, определяют количество и процентное содержание патологических форм клеток. Самые совершенные анализаторы снабжены специальной системой, обеспечивающей автоматическое приготовление мазка крови, включая его окраску и вывод изображения на экран монитора при помощи телевизионного микроскопа. В конструкции последних приборов наряду с кондуктометрическим анализом используются проточные радиочастотные и оптические методы исследования клеток. В нашей стране широко распространены гематологические анализаторы, которые занимают промежуточное положение среди описанных выше – они дифференцируют лейкоциты на три популяции: лимфоциты, гранулоциты и средние клетки (Рис.6).

Рис.6. Лейкоцитарная гистограмма в норме: а) лимфоциты; б) средние клетки; в) гранулоциты

Последняя группа является интегральной и включает моноциты, эозинофилы, базофилы и плазматические клетки. Дифференциальная диагностика лейкоцитов на три популяции может быть использована при обследовании практически здоровых людей, а также для динамического наблюдения за состоянием лейкоцитарной формулы больного, при условии, что первичный анализ крови дал сопоставимые результаты автоматизированного и визуального анализа дифференциального счета лейкоцитов.

При наличии выраженной патологии со стороны лейкопоэза лейкоцитарная гистограмма существенно меняется, при этом анализатор может не давать числовых значений дифференцировки (Рис.7). Так, при остром лейкозе, характерным признаком которого является лейкопения, гистограмма WBC представляет собой одногорбую кривую невысокой амлитуды, расположенную в зоне лимфоцитов (Рис.7а).

Хронический миелобластный лейкоз характеризуется лейкоцитозом, причем лейкоцитарная формула представлена преимущественно гранулоцитами разной степени зрелости. Поэтому гистограмма распределения WBC имеет вид одногорбой кривой высокой амплитуды, пик которой расположен в зоне гранулоцитов (Рис. 7б). Для кривой распределения лейкоцитов при хроническом лимфобластном лейкозе также характерен один пик, однако расположен он в зоне малых объемов, так как в лейкоцитарной формуле преобладают лимфоциты (Рис.7в).

Поскольку при грубой патологии со стороны лейкопоэза гематологические анализаторы часто не дают числовых значений дифференцировки, то в лабораториях, где обследуются пациенты с гематологическими заболеваниями, а также больные, находящиеся на почечном гемодиализе и некоторые другие группы пациентов, определение лейкоцитарной формулы с применением автоматических гематологических анализаторов имеет ограниченное значение и процент проб нуждающихся в дополнительной визуальной оценке мазка крови остается высоким.

Метаболические изменения при хранении тромбоцитных концентратов, заготовленных разными методами

О.В. Карпова, Е.В. Ройтман, И.М. Колесникова, П.Е. Трахтман, М.Ю. Андрианова, А.М. Исаева, С.А. Румянцев

ФГБУ Федеральный научно-клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии имени Дмитрия Рогачева Министерства здравоохранения Российской Федерации, Москва, Россия

Трансфузиология №3, 2014

Резюме

Считается, что тромбоцитный концентрат (ТК), заготовленный с использованием 30–40% аутологической плазмы и 60–70% плазмозамещающих растворов (ПЗР), сохраняет приемлемые значения рН и концентрации глюкозы в течение длительных сроков хранения. Целью данной работы явилась характеристика метаболических изменений, происходящих на разных сроках хранения ТК в зависимости от способа его заготовки. Проанализировано 26 образцов ТК, заготовленного на 100% плазме, и 24 образца ТК, заготовленного с использованием ПЗР. В образцах ТК оценивали содержание электролитов, глюкозы, молочной кислоты и кислотно-основное состояние (КОС).

Исследования выполняли в день заготовки ТК, через 24 часа, на 3 и 5 сутки хранения. Выявлено, что независимо от способа заготовки тромбоциты в ТК сохраняли метаболическую активность в течение первых 5 суток. Замена 70% плазмы на ПЗР обеспечивала стабильность КОС в ТК, несмотря на истощение бикарбонатного буфера и интенсивную продукцию лактата. При хранении ТК, заготовленных с 70% ПЗР, интенсивность метаболических процессов была сходна с происходящими процессами в ТК, заготовленных на 100% плазме. При этом в первые сутки хранения ТК, заготовленных с 70% ПЗР, превалировали анаэробные процессы.

Ключевые слова: тромбоциты, тромбоцитный концентрат, плазма, добавочный раствор, хранение, глюкоза, лактат, метаболизм.

Введение

Процедура заготовки, процессинга и хранения тромбоцитов приводит к выраженным изменениям морфологических и функциональных характеристик тромбоцитов, что, в свою очередь, способствует снижению терапевтической эффективности трансфузионной терапии [1, 2].

Одним из способов сохранения количества и функциональной активности тромбоцитов в течение длительных сроков хранения является использование плазмозамещающих растворов (ПЗР) при заготовке тромбоцитного концентрата (ТК) [3–5].

Компонентный состав ПЗР, используемых при заготовке ТК, в целом сходен. Считается, что ТК, заготовленный с использованием 30–40% аутологической плазмы и 60–70% ПЗР, сохраняет приемлемые значения рН и концентрации глюкозы в течение длительных сроков хранения [6]. Входящие в состав ПЗР цитрат, ацетат и фосфат снижают интенсивность гликолиза в тромбоцитах; магний и калий снижают связывание резидуального фибриногена с рецепторами GPIIb/IIIa, предотвращая тем самым агрегацию тромбоцитов [7, 8].

Конкретные показания к переливанию тромбоцитов, как правило, определяются количеством тромбоцитов в периферической крови и количеством тромбоцитов в ТК без учета сохраненной функциональной способности как тромбоцитов реципиента, так и тромбоцитов в ТК [9].

В свою очередь, различные методы заготовки тромбоцитов обеспечивают не только различное содержание тромбоцитов, но и их различное функциональное состояние. Поэтому В.Б. Хватов (2011) небезосновательно считает необходимым регламентировать переливание клеточных компонентов не только по количеству клеток, но и по параметрам их биологической полноценности и функциональной активности [10].

Целью данной работы явилось изучение характеристик биохимических изменений, происходящих на разных сроках хранения и в зависимости от способа заготовки тромбоконцентрата.

Материалы и методы

Концентраты тромбоцитов были получены от здоровых доноров, прошедших рутинное обследование и выразивших согласие на проведение процедуры автоматического афере- за. Заготовка ТК была проведена двумя способами: классический – в 100% донорской плазме, и с использованием добавочного раствора – SSP+ (MacoPharma, Франция). Аферезные ТК были получены на автоматизированном сепараторе клеток крови Trima Accel (Terumo BCT, США), версия 6,0. Установленный объем добавочного раствора SSP+ добавляли сразу по окончании процедуры афереза в расчете на конечную концентрацию тромбоцитов не менее 5–6 х 109 на 40 мл. При этом соотношение донорской плазмы и SSP+ составляло 1:3 (30% аутологичной плазмы и 70% SSP+). Средняя концентрация тромбоцитов при заготовке в обеих группах ТК составила 6,85х1011, средний объем ТК – 458,46 мл. Все заготовленные ТК лейкоредуцированы (с помощью встроенной в расходный материал камеры лейкоредукции LRS) c обязательным последующим лабораторным контролем. Все ТК, участвовавшие в исследовании, содержали менее 106 лейкоцитов.

Изучены 26 образцов ТК, заготовленных на 100% плазме, и 24 образца ТК, заготовленного с использованием добавочного раствора SSP+ в объеме 70%. В образцах ТК оценивали содержание электролитов, глюкозы, молочной кислоты и кислотно-основное состояние (КОС) с помощью анализатора iSTAT (Abbot Laboratories Inc., США; Сервис ИнструментПлюс, Россия). Исследования выполняли в день заготовки ТК, через 24 часа, на 3 и 5 сутки хранения.

Статистический анализ выполнен с помощью программного пакета MedCalc® Ver.11.2.0.0 (MedCalc Software, США) методами ANOVA. Данные представлены как Медиана ± σ. Сравнительное исследование выполнено с применением критерия парного t-теста. Различия считали достоверными при р 0,05); через трое суток хранения значение рН в ТК-П составляло 7,366 ± 0,284 и в ТК-ПЗР – 7,21 ± 0,199 (р >0,05). На 5 сутки хранения в обоих ТК установлено одинаково выраженное истощение бикарбонатной буферной системы. В те же сроки при отсутствии достоверной разницы между величинами рН выявлен более широкий разброс значений этого показателя для ТК-П (7,172 ± 0,309) по сравнению с ТК-ПЗР (7,283 ± 0,155). Оба ТК не различались между собой по величине рО2 на всех сроках хранения, однако интенсивность процессов гликолиза и продукция лактата различались (рис. 3).

Можно видеть, что в обоих ТК сохранялась высокая метаболическая активность тромбоцитов. При этом в ТК-П потребление глюкозы и продукция лактата происходили, в целом, с одинаковой интенсивностью в течение всех 5 суток хранения. Напротив, в ТК-ПЗР в течение первых 24 часов хранения регистрировался «всплеск» образования лактата, который в сочетании с умеренным потреблением глюкозы (по степени уменьшения ее концентрации) свидетельствовал, что в этот период в тромбоцитах превалировали процессы анаэробного метаболизма. Процесс аэробного окисления глюкозы становился наиболее выраженным к 5 суткам хранения.

Обсуждение

Сравнение свойств тромбоцитов, заготовленных в плазме и методом афереза с использованием ПЗР, показывает, в целом, сходные результаты. Отмечено стабильное значение рН, превалирование величины pO2 над значениями pCO2, отсутствие существенных различий в концентрации бикарбоната, интенсивности потребления глюкозы и продукции лактата [11]. В течение 9 суток удовлетворительные функциональные свойства показывают тромбоциты, сохраняющиеся в среде с добавлением магния, калия и глюкозы и 20% плазмы [12]. Для раствора SSP+ Zhang et al (2008) также отметили хорошее поддержание величины рН и низкие скорости потребления глюкозы, но указали на то, что его использование может быть ограничено из-за нарушения осмотического рав- новесия [13].

Тромбоциты способны одновременно усваивать глюкозу двумя путями – аэробно и анаэробно, однако баланс между цитозольным и митохондриальным путями зависит не только от физиологической активации этих клеток, но и от in vitro условий, превалирующих при хранении [14]. Поэтому использование глюкозы в качестве субстрата продолжает оставаться спорным из-за интенсификации продукции лактата и последующего снижения величины рН –триггерных факторов нарушения функциональных свойств тромбоцитов при хранении. Хотя вполне возможно, что тромбоцитарные нарушения в процессе хранения вызваны не усилением анаэробного гликолиза, а, скорее, утратой митохондриальной активности из-за сниженной доступности собственно субстрата (глюкозы) [15].

В отношении длительности хранения мнение исследователей также сходно. Например, в работе Филиной и др. (2011) отмечается, что концентраты тромбоцитов, полученные методом афереза, сохраняют должные параметры качества в течение 5 суток хранения [16].

Полученные нами результаты в целом сходны с приведенными выше. Однако они не позволяют полностьюсогласиться с выводами Amorini et al (2013) о снижении доступности глюкозы и вообще спорности включения глюкозы в состав ПЗР [15]. Также, учитывая современные технологии заготовки и рассматривая период хранения тромбоконцентратов в пределах 5 суток, мнение Gyongyossy-Issa et al (2011) о зависимости метаболизма тромбоцитов от превалирующих при хранении in vitro условий, на наш взгляд, не представляется существенным [14].

Заключение

Независимо от способа заготовки ТК тромбоциты сохраняют жизнеспособность в течение первых 5 суток. Замена 70% плазмы на ПЗР обеспечивает стабильность кислотноосновного состояния ТК, несмотря на истощение бикарбонатного буфера и интенсивную продукцию лактата. При хранении ТК, заготовленного с 70% ПЗР, интенсивность метаболических процессов сходна с происходящими в ТК, заготовленного со 100% плазмы. При этом в первые сутки хранения ТК, заготовленного с 70% ПЗР, превалируют анаэробные процессы.

Поскольку полученные нами результаты оценки метаболической активности тромбоцитов в целом сходны, то можно полагать, что замена плазмы на современные ПЗР при заготовке ТК, как минимум, не снижает жизнеспособность этих клеток.

Литература

1. Seghatchian J. Platelet storage lesion: an update on the impact of various leukoreduction processes on the biological response modifiers // Transfus. Apher. Sci. – 2006. – Vol. 34. – Р. 125-130.

2. Holme S. Storage and quality assessment of platelets // Vox. Sang. – 1998. – Vol. 74, № 2. – Р. 207-216.

3. Gulliksson H., Sallander S., Pedajas I. et al. Storage of platelets in additive solutions: a new method for storage using sodium chloride solution // Transfusion. – 1992. – Vol. 32. – Р. 435-440.

4. Sandgren P., Mayaudon V., Payrat J.M. et al. Storage of buffy-coat-derived platelets in additive solutions: in vitro effects on platelets stored in reformulated PAS supplied by a 20% plasma carry-over // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 98. – Р. 415-422.

5. Seghatchian J., Krailadsiri P. Platelet storage lesion and apoptosis: are they related? // Transfus. Aphe.r Sci. – 2001. – Vol. 24. – Р. 103-105.

6. Gulliksson H. Storage of platelets in additive solutions: the effect of citrate and acetate in in vitro studies // Transfusion. – 1993. – Vol. 33. – Р. 301-303.

7. Gulliksson H., Larsson S., Kumlien G., Shanwell A. Storage of platelets in additive solutions: effects of phosphate // Vox. Sang. – 2000. – Vol. 78. – Р. 176-184.

8. de Wildt-Eggen J., Schrijver J.G., Bins M. et al. Storage of platelets in additive solutions: effects of magnesium and/or potassium // Transfusion. – 2002. – Vol. 42. – Р. 76-80.

9. Худина Е.Ю. Однозначен ли прирост количества тромбоцитов в периферической крови после трансфузии концентрата тромбоцитов приросту их функциональной активности? // Бюллетень медицинских Интернет конференций. – 2013. – Т. 3, № 2. – С. 79.

10. Хватов В.Б. К оценке биологической полноценности и функциональной активности клеточных компонентов крови, используемых в клинической практике // Эфферентная и физико-химическая медицина. – 2011. – № 3. – С. 21-25.

11. Costa E.J., Guimarães T.M., de Almeida N.C., de Toledo С.Р. de Paulo V. Comparison of cytokine levels and metabolic parameters of stored platelet concentrates of the Fundação Hemominas, Belo Horizonte, Brazil // Rev. Bras. Hematol. Hemoter. – 2012. – Vol. 34, № 2. – Р. 94-99.

12. Sandgren P., Mayaudon V., Payrat J.M. et al. Storage of buffy-coat-derived platelets in additive solutions: in vitro effects on platelets stored in reformulated PAS supplied by a 20% plasma carry-over // Vox. Sang. – 2010. – Vol. 98 (3 Pt 2). – Р. 415-422.

13. Zhang J.G., Carter C.J., Culibrk B. et al. Buffy-coat platelet variables and metabolism during storage in additive solutions or plasma // Transfusion. – 2008. – Vol. 48, № 5. – Р. 847- 856.

14. Gyongyossy-Issa M.I. Glucose in platelet additive solutions: to add or not to add? // Transfus. Apher. Sci. – 2011. – Vol. 44, № 3. – Р. 283-295.

15. Amorini A.M., Tuttobene M., Tomasello F.M. et al. Glucose ameliorates the metabolic profile and mitochondrial function of platelet concentrates during storage in autologous plasma // Blood Transfus. – 2013. – Vol. 11, № 1. – Р. 61-70.

16. Филина Н.Г., Иванчин В.А., Трофина Н.Ю. и др. О качестве концентратов тромбоцитов // Трансфузиология. – 2011. – Т. 12, № 4. – С. 32-37.

Ссылка на основную публикацию